產品簡介：

瓊脂糖凝膠 DNA 回收試劑盒（過柱法）用于從瓊脂糖凝膠中或DNA反應體系中高效快速回收DNA片段。

產品特點：

1.高效，回收效率-最-高可達90%（跟片段大小和膠濃度等因素有關）。

2.快速，整個過程只需要十余分鐘。

3.洗柱液不需要額外加乙醇。

4.兩用，既可用于瓊脂糖膠回收，也可以用于PCR或其他酶反應回收。

5.范圍廣，回收DNA的長度范圍為50 bp-40 Kb（但效率各不相同）。

6.最大吸附量為10ug。

7.回收的DNA可直接用于酶切、連接、PCR、測序等多種分子生物學實驗。

8.本試劑盒足夠純化50片含DNA的瓊脂糖凝膠條（每片膠條重量不超過250mg），足夠純化50次酶反應（包括PCR反應，每次體積不超過250uL）。

產品參數：

規格及成分

保存和運輸

常溫運輸及保存，有效期為一年。由于通用溶膠液是高鹽溶液，因此在低溫時容易產生沉淀。如果產生沉淀，需要 60℃加熱溶解后才可以使用。

自備試劑

異丙醇。

使用方法：

1.用自備的干凈刀片切取含 DNA 片段的瓊脂糖凝膠（100 mg 左右，盡可能多地把多余的膠切除，否則會影響回收效率），放入一干凈的 1.5 mL 塑料離心管中稱重，按重量比為 1：2 的比例加入通用溶膠液 (0.1 g 的瓊脂糖凝膠需要加入 0.2mL 的通用溶膠液)。如果瓊脂糖凝膠的濃度大于 2%，則需要按 1：3 的比例加入通用溶膠液。

2.50℃保溫 10 分鐘使膠完-全溶化，每隔 2-3 分鐘振蕩數次以促進瓊脂糖凝膠的溶化。如果片段長度在 300bp 以下，建議不要 50℃保溫，而是延長溶膠時間，以免 DNA 變性，影響回收率。

3.在等待期間，活化離心吸附柱。在離心吸附柱中加入 0.5mL 吸附柱活化液，套上收集管后室溫放置 2 分鐘，然后 12,000 rpm 離心 2 分鐘，倒棄穿透液，再將吸附柱套上收集管后待用?；罨蟮碾x心吸附柱必須在當天使用。

4.在上柱前，在溶化的膠中加入相當于膠塊體積 1/2 的異丙醇（對 100mg 膠塊， 加 50uL），快速振蕩 10 秒混勻。

5.將溶液轉移到離心吸附柱中，套上收集管，靜置 3 分鐘。注意：靜置有助于DNA 與離心吸附柱的硅膠膜結合。本產品提供的離心吸附柱的最大上樣體積為 0.8mL，若溶膠液的總體積大于 0.8mL，一次加不完，可以分多次將溶液加入到吸附柱中。

6.12000-15000 g 室溫離心 1 分鐘，倒掉收集管中的穿透液。

7.加入 0.7mL 通用洗柱液于離心柱中，12000-15000 g 離心 1 分鐘，倒棄收集管中的廢液。如果回收的 DNA 用于鹽敏感實驗（如平末端連接或直接測序）,建議加入通用洗柱液后靜置 2-5 分鐘再離心。

8.12000-15000 g 離心半分鐘以去除離心柱中的殘留液體。

9.將離心柱吸附置于一新的干凈的塑料離心管中，加入 50 uL DNA 洗脫液于離心吸附柱硅膠膜的中央。注意：如果回收的 DNA 用于測序，則可用重蒸水洗脫DNA。DNA 洗脫液可以也用 TE 替代，但用水或 TE 替代 DNA 洗脫液時，回收率可能稍有降低。

10.  靜置 3 分鐘后 12000-15000 g 離心 1 分鐘。

11.離心管底部所得溶液即為純化的 DNA 溶液，可立即用于后續實驗或者放-20℃ 長期保存。如果將所得 DNA 溶液再次加回到離心吸附柱中，重復洗脫過程， 將得到更多的 DNA。

12.用電泳方法或測 OD 方法確定回收所得 DNA 的濃度。如果 DNA 濃度低，也可能低于測 OD 的分光光度計的檢測極限之下，此種情況下就不能用此法。

注意事項：

1.通用洗柱液含有容易揮發物質，使用后一定要擰緊瓶蓋，密閉保存。

2.瓊脂糖凝膠體積的大小與回收率成反比關系，即體積越大，越不利于回收，一  次膠回收以使用 100 mg 瓊脂糖凝膠為宜。

3.如果在 5-10 分鐘內凝膠溶化不完-全，可以適當的延長水浴時間以使膠充分溶化，否則 DNA 包裹在瓊脂糖凝膠中，影響 DNA 的回收效率。

4.膠溶化后的液體轉移到離心柱后，可以延長靜置時間使 DNA 與膜充分結合， 提高回收效率。

5.洗脫 DNA 前的空甩很重要，其目的是去除膜上殘留酒精，否則殘留酒精會影響后續 DNA 反應。

6.增大 DNA 洗脫液使用量有利于回收，但要注意實際上樣量與最終回收體積的關系，以便于計算回收率。DNA 洗脫液可以用 TE 或水替代，但回收率稍有降低。

選擇我們的瓊脂糖凝膠 DNA 回收試劑盒（過柱法），就是選擇精準、高效、可靠的檢測方案，為您的科研實驗保駕護航！